简介：

糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus 在 1946 年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色试剂盒不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸(又称高碘酸)是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的 1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与 Schiff 试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。

糖原PAS染色液专门用于培养细胞的染色，是采用特有配方技术，大大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需 1h。该试剂适用于科研领域，不适用于临床诊断。。

产品组成：

储存条件： 一年有效。

自备材料： 1、10%福尔马林固定液 2、蒸馏水 3、系列乙醇

操作步骤(仅供参考)： 

1、常规固定，常采用 10%福尔马林固定液，常规脱水包埋。

2、石蜡切片二甲苯或脱蜡透明液脱蜡入蒸馏水﹔冰冻切片直接入蒸馏水。

3、自来水冲洗 2~3min，再用蒸馏水浸洗 2 次。入过碘酸溶液室温氧化。

4、入过碘酸溶液室温放置 5~8min，一般不宜超过 10min。

5、自来水冲洗 1 次，再用蒸馏水浸洗 2 次。

6、入 Schiff Reagent 置于室温阴暗处浸染 10～20min，自来水冲洗 10min。

7、入苏木素染色液，染细胞核 1~2min，酸性乙醇分化液分化 2~5s。

8、自来水冲洗 10~15min，更换蒸馏水清洗，使其返蓝。

9、逐级常规乙醇脱水，二甲苯或脱蜡透明液透明，中性树胶封固。

染色结果：

备注：样品在过碘酸溶液和 Schiff Reagent 中作用时间的长短很大程度上影响颜色的深浅。

阴性对照(可选)：

1、取淀粉酶 1g 溶解于 PBS(pH5.3)100ml，处理 30~60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

2、(备选方案)取唾液片(过滤后用)处理 30~60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

3、(备选方案)如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入SchiffReagent，结果应为阴性。

注意事项： 

1、过碘酸不宜过久氧化，氧化时的温度最佳范围为 18～22℃。

2、过碘酸溶液、苏木素染色液、Schiff Reagent 应密闭保存于 4℃，使用时避免接触过多的阳光和空气，使用前需提前 30min 取出放至室温，并在避光暗处使用。

3、关于过碘酸和 Schiff 的作用时间非常重要，需要根据切片厚薄、细胞或组织的类别等实验具体情况决定。

4、切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。

5、酸性乙醇分化液应经常更换新液，其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。

6、冷冻切片染色时间尽量要短。