测定意义：

木聚糖酶(EC 3.2.1.8)主要由微生物产生，能催化水解木聚糖，也被称为戊聚糖酶或半纤维素酶，可分解酿造或饲料工业碱的原料细胞壁以及β+葡聚糖，降低酿造碱物料的粘度，促进有效物质的释放，以及降低饲料碱的非淀粉多糖，促进营养物质的吸收利用，因而广泛的应用于酿造和饲料工业碱，BAX一般分离自最适生长pH为9 +11的微生物。

测定原理：

BAX在碱性环境碱催化木聚糖降解成还原性寡糖和单糖，在沸水浴条件下进一步与3,5+二硝基水杨酸发生显色反应，在540nm处有特征吸收峰，反应液颜色的深浅与酶解产生的还原糖量成正比，通过测定反应液在540nm吸光值增加速率，可计算BAX活力。

组成：

试剂一：液体10ml×1瓶，4℃避光保存。（若出现白色絮状或颗粒状沉淀，可60℃加热溶解后使用）。

自备仪器和用品：

天平、低温离心机、恒温水浴锅，可见分光光度计/酶标仪、微量石英比色皿/96孔板和蒸馏水。

粗酶提取：

1. 发酵液：发酵液于8000g，4℃，离心15min，取上清，作为待测样品。

2. 酶干粉：称约0.1mg，加1ml缓冲液溶解待测。

3. 组织样本：按照组织质量（g）：提取液体积(ml)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1ml缓冲液）进行冰浴匀浆，然后8000g，4℃，离心10min，取上清待测。

测定操作表：

1、 分光光度计/酶标仪预热30min，调节波长至540nm。

2、 操作表

BAX计算公式：

a. 用微量石英比色皿测定的计算公式如下

标准曲线：y = 2.8432x - 0.0293，R² = 0.9985

1. 按液体体积活力计算：

酶活定义：50℃，pH9.0条件下，每毫升液体样本每分钟分解木聚糖产生1nmol 还原糖所需的酶量为一个碱性木聚糖酶的活力单位。

BAX活力（nmol/min/ml）= （ΔA+0.0293）÷2.8432÷150÷T×稀释倍数×10⁶

= 391× (ΔA+0.0293)

2. 按蛋白浓度计算：

酶活定义：50℃，pH9.0条件下，每毫克蛋白每分钟分解木聚糖产生1nmol 还原糖所需的酶量为一个碱性木聚糖酶的活力单位。

BAX活力（nmol/min/mg prot）= （ΔA +0.0293）÷2.8432÷150÷T×稀释倍数×10⁶÷Cpr

= 391×(ΔA +0.0293 ) ÷Cpr

3. 按鲜重计算：

酶活定义：50℃，pH9.0条件下，每克样本每分钟分解木聚糖产生1nmol 还原糖所需的酶量为一个碱性木聚糖酶的活力单位。

BAX活力（nmol/min/g鲜重）= （ΔA +0.0293）÷2.8432÷150÷T×稀释倍数×10⁶÷W

= 391×(ΔA +0.0293 ) ÷W

150：木糖的分子量；T：反应时间，30min；稀释倍数=V反总÷V样=300µL÷60µL=5；

10⁶：转化因子，即1mg/ml=10⁶ng/ml；Cpr：样本蛋白浓度，mg/ml；W：样本质量，g。

b.用96孔板测定的计算公式如下

标准曲线：y = 1.4216x - 0.0293，R² = 0.9985

1. 按液体体积活力计算：

酶活定义：50℃，pH9.0条件下，每毫升液体样本每分钟分解木聚糖产生1nmol 还原糖所需的酶量为一个碱性木聚糖酶的活力单位。

BAX活力（nmol/min/ml）= （ΔA+0.0293）÷1.4216÷150÷T×稀释倍数×10⁶

= 782× (ΔA+0.0293)

2. 按蛋白浓度计算：

酶活定义：50℃，pH9.0条件下，每毫克蛋白每分钟分解木聚糖产生1nmol 还原糖所需的酶量为一个碱性木聚糖酶的活力单位。

BAX活力（nmol/min/mg prot）= （ΔA +0.0293）÷1.4216÷150÷T×稀释倍数×10⁶÷Cpr

= 782×(ΔA +0.0293 ) ÷Cpr

3. 按鲜重计算：

酶活定义：50℃，pH9.0条件下，每克样本每分钟分解木聚糖产生1nmol 还原糖所需的酶量为一个碱性木聚糖酶的活力单位。

BAX活力（nmol/min/g鲜重）= （ΔA +0.0293）÷1.4216÷150÷T×稀释倍数×10⁶÷W

= 782×(ΔA +0.0293 ) ÷W

150：木糖的分子量；T：反应时间，30min；稀释倍数=V反总÷V样=300µL÷60µL=5；

10⁶：转化因子，即1mg/ml=10⁶ng/ml；Cpr：样本蛋白浓度，mg/ml；W：样本质量，g。

注意事项：

1. 吸光度变化应该控制在0.01～0.8之间，否则加大样品量或稀释样品，注意计算公式中参与计算的稀释倍数要相应改变；也可以延长或者缩短反应时间。

2. 试剂盒2+8℃保存，保质期3个月，建议尽快使用。