正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定                                             

测定意义：

β-GC（EC 3.2.1.21）广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中，催化β-糖苷键水解，具有多方面生理作用：在纤维素的糖化作用中，β-GC负责进一步水解纤维素二糖和纤维素寡糖生成葡萄糖；β-GC水解萜烯类香气前驱体，使糖苷键合态变成游离态。从而产生香味；β-GC能够水解植物体内野黑樱苷，释放HCN，从而防止昆虫取食。

测定原理：

β-GC分解对-硝基苯-β-D-吡喃葡萄糖苷生成对-硝基苯酚，后者在400nm有最大吸收峰，通过测定吸光值升高速率来计算β-GC活性。

组成：

试剂一：粉剂×2瓶，-20℃保存；临用前每瓶加入10ml蒸馏水，充分溶解备用；用不完的试剂仍-20℃保存。

自备仪器和用品：

可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1ml玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。

粗酶液提取：

1、细菌或培养细胞：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照细菌或细胞数量（10⁴个）：提取液体积（ml）为500~1000：1的比例（建议500万细菌或细胞加入1ml提取液），超声波破碎细菌或细胞（冰浴，功率20％或200W，超声3s，间隔10s，重复30次）；15000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。

2、组织：按照组织质量（g）：提取液体积(ml)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1ml提取液），进行冰浴匀浆。15000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。

3、培养液、血清（浆）等液体样本：直接检测。

测定步骤：

1、 分光光度计预热30min以上，调节波长至400nm，蒸馏水调零。

2、 加样表

迅速混匀，放入37℃准确水浴30min后，立即放入95℃水浴5min（盖紧，以防止水分散失），流水冷却后充分混匀（以保证浓度不变），8000g，4℃，离心5min，取上清液

充分混匀，室温静置2min后， 400nm处测定吸光值A，计算ΔA=A测定管-A对照管。每个测定管需设一个对照管。

β-GC活力计算：

标准条件下测定的回归方程为y =0.00543x -0.0027；x为标准品浓度（nmol/ml），y为吸光值。

（1）按液体体积计算：

单位的定义：每ml样本每分钟产生1nmol对-硝基苯酚定义为一个酶活性单位。

β-GC活性(nmol/min/ml)=[(ΔA+0.0027) ÷0.00543×V反总]÷V样÷T

=61.39×(ΔA+0.0027)

（2）按样本蛋白浓度计算：

单位的定义：每mg组织蛋白每分钟产生1nmol对-硝基苯酚定义为一个酶活力单位。

β-GC活力(nmol/min/mg prot)=[(ΔA+0.0027)÷0.00543×V反总]÷(V样×Cpr)÷T

=61.39×(ΔA+0.0027) ÷Cpr

需要另外测定，建议使用本公司BCA蛋白质含量测定试剂盒。

（3）按样本鲜重计算：

单位的定义：每g组织每分钟产生1nmol对-硝基苯酚定义为一个酶活力单位。

β-GC活力(nmol/min /g鲜重)＝[(ΔA+0.0027)÷0.00543×V反总]÷(W×V样÷V样总)÷T

=61.39×(ΔA+0.0027) ÷W

（4）按细菌或细胞密度计算：

单位的定义：每1万个细菌或细胞每分钟产生1nmol对-硝基苯酚定义为一个酶活力单位。

β-GC活力(nmol/min /10⁴ cell)=[(ΔA+0.0027) ÷0.00543×V反总]÷(500×V样÷V样总)÷T

=0.123×(ΔA +0.0027)

V反总：反应体系总体积，1ml；V样：加入反应体系中样本体积，0.1ml；V样总：加入提取液体积，1ml；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/ml；W：样本质量，g； 500：细胞或细菌总数，500万；T：反应时间，30min。