正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定                                             

测定意义：

GOD（EC 1.1.3.4）广泛存在于动物、和植物中，催化葡萄糖氧化生成葡萄糖酸，并产生H₂O₂，是生物体中产生活性氧的代谢途径之一

测定原理：

GOD催化产生H₂O₂，过氧化物酶催化H₂O₂氧化4-氨基安替比林偶联酚，生成有色化合物，在500 nm有特征吸收峰，颜色深浅与GOD活性成线性关系。

试剂的组成和配制：

试剂一：粉剂×1瓶，-20℃保存；临用前加入20ml缓冲液充分溶解待用；用不完的试剂4℃保存一个月；

试剂二：粉剂×1瓶，-20℃保存；临用前加入20ml缓冲液充分溶解待用；用不完的试剂4℃保存一个月。

自备仪器和用品：

可见分光光度计、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、1 ml玻璃比色皿、研钵、冰、蒸馏水。

样品测定的准备：

1、细菌、细胞或组织样品的制备：

细菌或培养细胞：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照细菌或细胞数量（10⁴个）：提取液体积（ml）为500~1000：1的比例（建议500万细菌或细胞加入1ml提取液），超声波破碎细菌或细胞（冰浴，功率20％或200W，超声3s，间隔10s，重复30次）；8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。

组织：按照组织质量（g）：提取液体积(ml)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1ml提取液），进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。

2、血清（浆）样品：直接检测。

测定步骤：

1、 分光光度计或酶标仪预热30min以上，调节波长至500nm，蒸馏水调零。

2、 试剂一和试剂二的配制：参见试剂的组成和配制。

3、煮沸样本的准备：取500μl样本至新的EP管中，95℃水浴10min，冷却至室温后，8000g 4℃离心10min，取上清作为对照管的煮沸样本待测。

4、测定操作表

混匀，35'C保温15min后，于500nm波长处读取吸光度。ΔA=A测定管-A对照管。每个测定管需设一个对照管。

GOD活力单位的计算：

1、标准条件下测定回归方程为y = 2.8348x - 0.0169；x为H₂O₂标准品浓度（μmol/ml），y为ΔA。

1、血清（浆）GOD活力的计算

单位定义：每ml血清（浆）每分钟催化产生1nmol H₂O₂为一个酶活力单位。

GOD（nmol/min/ml）= (ΔA+0.0169) ÷2.8348×V反总÷V样÷T×1000=58.8×(ΔA+0.0169)

2、细菌、细胞或组织GOD活力的计算

（1）按蛋白浓度计算

单位定义：每mg组织蛋白每分钟催化产生1nmol H₂O₂为一个酶活力单位。

GOD（nmol/min/mg prot）=(ΔA+0.0169) ÷2.8348×V反总÷(V样×Cpr) ×1000÷T

=58.8×(ΔA+0.0169)÷Cpr

（2）按样本鲜重计算

单位定义：每g组织每分钟催化产生1nmol H₂O₂为一个酶活力单位。

GOD（nmol/min/g鲜重）=(ΔA+0.0169) ÷2.8348×V反总÷(W×V样÷V样总) ×1000÷T

=58.8×(ΔA+0.0169)÷W

（3）按细菌或细胞密度计算

单位定义：每一万个细菌或细胞每分钟催化产生1nmol H₂O₂为一个酶活力单位。

GOD（nmol/min/10⁴ cell）=(ΔA+0.0169) ÷2.8348×V反总÷(500×V样÷V样总) ×1000÷T

=0.118×(ΔA+0.0169)

V反总：反应体系总体积，0.625ml； V样：加入样本体积，0.25ml；V样总：加入提取液体积，1 ml；T：反应时间，15 min； Cpr：样本蛋白质浓度，mg/ml；W：样本质量，g；500：细菌或细胞总数，500万。

(3)按细菌或细胞密度计算

NADPH (nmol/10⁴ cell）=[(△A -0.0259）÷1.2396×V1) ]÷(500×V1÷V2)=0.003× (△A -0.0259）

V1：加入反应体系中样本体积，0.05ml；V2：加入提取液体积，2ml；V3：加入血清（浆）体积：0.1ml；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/ml；W：样本质量，g；500：细胞或细菌总数，500万。