背景

      短时间内进行大量新冠病毒检测是控制新冠病毒传播的关键之一，发展可现场诊断的检测设备有利于促进新冠肺炎的早期干预和治疗，并有效降低疾病传播风险。重组酶聚合酶扩增（RPA）以及重组酶介导扩增（Recombinase aided amplification，RAA）因其快速、简便、等温而成为现场诊断的首选扩增技术，但可能存在非特异性扩增的假阳性问题。规律成簇的间隔短回文重复序列（Clustered regularly interspaced short palindromic repeats，CRISPR）具有良好的特异性和可靠性。RPA与CRISPR的结合可以兼具灵敏度和特异性，在开发下一代POCT分子诊断技术方面具有广阔前景。然而，目前大多数CRISPR/Cas辅助RPA方法包含前扩增子的转移和多种人工操作，使测试过程复杂化，增加了污染风险，而少数一锅法的反应又需要较长的反应时间。

     近期，南方科技大学的研究人员开发了一种双CRISPR/Cas12a辅助的逆转录-重组酶介导扩增（RT-RAA）检测方法和“样本进-结果出”的离心微流控平台，该平台可在30min内自动检测1拷贝/μL的新冠病毒（SARS-CoV-2），具有一步、自动化、快速和灵敏的优点，在临床诊断和疾病预防方面具有重大潜力。相关研究成果以“Dual-CRISPR/Cas12a-Assisted RT-RAA for Ultrasensitive SARS-CoV‑2 Detection on Automated Centrifugal Microfluidics”为题发表于Analytical Chemistry期刊。

      该基于双CRISPR/Cas12a辅助的RT-RAA的自动化微流控平台操作流程和工作原理如图1所示，RT-RAA和CRISPR/Cas12a试剂分别通过冷冻干燥的方式预装入扩增室和检测室进行长期保存。操作人员只需加入核酸样品溶液，并将芯片放置在相应的检测仪器上，即可在30分钟内自动完成扩增-检测-报告流程。针对新冠病毒的E基因序列设计RT-RAA引物、Cas12a-crRNA序列，并引入标记FAM和BHQ-1的单链核酸报告序列。由于两个crRNA识别不同的位点，每个扩增子都可以激活两个CRISPR/Cas复合物，此双活性复合物显著提高了ssDNA-FQ报告基因的切割率，更有利于低浓度模板RNA的RT-RAA系统的检测。

图1 CRISPR/Cas12a辅助的RT-RAA的超敏检测SARS-CoV-2的自动化离心微流控平台

      研究人员首先验证了基于双CRISPR/Cas12a辅助的RT-RAA系统的可行性和灵敏度。引入CRISPR/Cas12后，可见空白组非特异性荧光信号明显降低。相较于单一crRNA，双crRNA策略的荧光信号最强，且实时荧光增长速度最高。此外，也通过凝胶电泳验证了双crRNA策略的可行性，如图2a所示，加入混合crRNA样品后，不仅生成了片段-F和片段-R，还生成了最短的片段-M。接着，研究人员采用无需开盖的一锅法测定该法的灵敏度（将CRISPR/Cas12a体系放在盖帽，RT-RAA体系放在管内），荧光成像和测定结果如图2b所示，该法可检测到低至约10个拷贝的SARS-CoV-2的E基因。

图2 双CRISPR/Cas12a法灵敏快速检测SARS-CoV-2

       鉴于微流控平台在微尺度流体自动控制方面的优势，该研究将双CRISPR/Cas12a辅助的RT-RAA法引入微流控平台（图3）。该平台由三层组装而成，分别为注射层（1mm）、连接层（1mm）和反应层（2mm）。其中，进样层上的8个进样孔（Φ=1mm）与移液管的20μL完美贴合，出样孔（Φ=0.5mm）保证样本量顺利进入样品腔。连接层上的连接通道可以保持密封芯片内样品腔与预分配腔之间的压力平衡。反应层上的600μm宽通道可以保证样品在低转速800转/分钟时顺利进入放大腔。扩增室与检测室之间的100μm窄通道和毛细管阀可以防止低转速下的样品进入检测，只有在转速达到3000转/分钟时才能使样品进入检测室。该芯片可以同时进行32项测试，只需要两次样品转移和两步反应，可认为是一种低成本、直接检测的离心微流控平台。图4a-b显示了该微流控平台的采样过程、检测仪器和检测流程。此外，采用不同颜色清晰地显示不同阶段的流动状态，将CuSO₄和海藻糖/聚蔗糖的混合物通过冷冻干燥的方式预加载到芯片中（图4c）。当以800转/分钟低速旋转时，黄色酸性FeCl₃溶液（代表目标溶液）进入扩增室，变为绿色，蓝色检测室表示无液体进入检测室。而当转速提高到3000转/分钟时，溶液进入检测室并变为绿色，因此该芯片按照预期逐步完成样品转移。

图3 离心微流控芯片的结构